Site Model

Plateforme de production
de vecteurs de synthèse
et vectorisation de biomolécules

Réalisation de projets personnalisés

1/ CCD camera
2/ Chambre d’acquisition
3/ Système d’anesthésie (air / isoflurane)
4/ Informatique (acquisition et traitement des images)

Bioluminescence in vivo

L’imagerie par bioluminescence permet la détection et la quantification in vivo de cellules conçues ou transfectées pour présenter une activité bioluminescente. Ce type d’imagerie repose principalement sur l’enzyme luciférase qui décompose la D-luciférine en présence d’adénosine triphosphate (ATP), produisant ainsi une lumière détectable par une caméra CCD. Comme l’ATP n’est produite que dans des cellules dont le métabolisme est actif, seules les cellules vivantes émettront de la lumière.
Parmi les applications les plus connues, on compte la détection macroscopique des organes transfectés, la détection et la quantification de la croissance tumorale ainsi que le suivi de la dissémination et de l’envahissement tumoral.
Non invasif, ce type d’équipement permet de limiter le nombre d’animaux requis tout en permettant de réaliser des cinétiques d’expression sur un même groupe d’animaux ce qui limite les biais inter-individuels.

Référence

A novel cationic lipophosphoramidate with di-unsaturated lipid chains : synthesis, physico-chemical and transfection activities. Le Gall, T. ; Loizeau, D. ; Picquet, E. ; Carmoy, N. ; Yaouanc, J.J. ; Deschamps, L., ; Delépine, P. ; Giamarchi, P. ; Jaffrès, P.A. ; Lehn, P. ; Montier T.
J. Med. Chem. 2010, 53, 1496-1508.

Transfection non-virale chez la souris.
Souris de droite : expression du transgène rapporteur Luciférase détectée au niveau de l’aire pulmonaire par bioluminescence in vivo (appareil NightOwl II, Berthold) après injection intraveineuse de plasmide Luc complexé avec le lipide cationique BSV4 (plateforme IBISA « SynNanoVect », Brest).

Fluorescence in vivo

Le principe de la fluorescence in vivo repose sur l’emploi d’un marqueur fluorescent qui permet de suivre l’élément marqué in situ et de suivre sa distribution.

Transfection non-virale chez la souris.
Localisation du complexe marqué au moyen d’une la sonde fluorescente au niveau de la tumeur greffée.

Référence

Long-circulating DNA lipid nanocapsules as new vector for passive tumor targeting. Morille M, Montier T, Legras P, Carmoy N, Brodin P, Pitard B, Benoît JP, Passirani C. Biomaterials 2010; 31, 321-9.

Evaluation préclinique

Dosage biochimique

Hématogramme

Ionogramme

Pour plus d'informations, téléchargez le fichier Imagerie

Contact

Tristan Montier

Inserm UMR 1078 Brest
Génétique, génomique fonctionnelle et biotechnologies
Faculté de médecine et des sciences de la santé
Université de Bretagne Occidentale
22 rue Camille Desmoulins
CS 93837
29238 BREST Cedex 3
Tél : 02 98 01 80 80
synnanovect@univ-brest.fr

Contact

Thierry Benvegnu

Ecole Nationale Supérieure de Chimie de Rennes
11 allée de Beaulieu CS 50837
35708 RENNES Cedex 7
Tél : 02 23 23 80 60
thierry.benvegnu@ensc-rennes.fr

Tarifs

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